清洗

1.完整的制样程序中有三次清洗

固定前清洗：洗去表面的灰尘、黏液等附着物，确保获得清洁的观察表面。

前固定后清洗：洗净醛类固定液，以免戊二醛与锇酸反应而削弱锇酸的固定效果。

脱水前的清洗：洗净固定液，以免与脱水剂反应产生沉淀影响观察效果。

2.清洗液的类型与选择：蒸馏水、生理盐水、加酶清洗液等

选择原则：清洗液的pH值、渗透压、温度应该尽量接近样品材料的生理值，以免样品因环境突变而产生形变。

植物材料：蒸馏水洗净尘埃；

动物材料：等渗生理盐水、5%碳酸钠或缓冲液洗去黏液等；

游离细胞：用等渗的缓冲液清洗(精子、血细胞、微生物)；

覆盖大量黏液的样品(胃黏膜)用低浓度的蛋白水解酶溶液洗；

组织培养细胞：用相应的培养液清洗；

特殊样品：如乳腺组织富含蛋白质和脂类，分别用16%的甘油和20%乙醇浸泡清洗；

表面附着蜡质、角质层的样品：用有机溶剂脱蜡。

3.清洗方法：不同材料采用不同方法，灵活应用

（1）植物材料：根部水冲洗去泥土，地上部用水冲洗或滴洗。观察气孔状态时应注意清洗后取材时机。

（2）较干净的样品：固定后20倍体积的清洗液轻摇，换液三次。

（3）表面附着大量黏液的样品：振荡法或喷射瓶壁加压冲洗。

（4）游离细胞、微生物：离心法清洗。

（5）超声波清洗：用于表面结构复杂、凹陷、皱折多的样品。样品置清洗液中，超声波清洗器内清洗，必须控制功率

（6）灌流清洗：观察管腔内壁结构的样品，避免血液、组织液凝聚而影响观察效果。通过动脉注入清洗液，直到排出液变清为止。必须控制压力